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甲醛洋菜膠體電泳

更新時間:2012-07-16點擊次數:1395

甲醛洋菜膠體電泳 (formaldehyde-agarose gel electrophoresis)甲醛是一種常用的RNA 變性劑。在進行甲醛洋菜膠體電泳分析時,必須先配制含有甲醛的洋菜膠體,RNA 也必須先以甲醛及formamide 進行變性處理,以確保其二度結構充分被打開。由于甲醛可能是一種致癌物質,配制膠體及進行電泳分析時都應在抽氣櫥里小心操作;進行電泳時所使用的緩沖液為MOPS (3-[N-morpholino] propanesulfonic acid)。此外,含有甲醛的洋菜膠體比較滑溜,容易破裂,在移動膠體時應特別留神。由于rRNA 占細胞RNA總量的80~85%,以ethidium bromide 染色后,呈現于膠體上的兩個主要RNA色帶應該分別是large 與small rRNAs (真核生物為28S 與18S,原核生物為23S 與16S);散布于small rRNA 附近,呈淡淡smear 的就是mRNAs,這是因為mRNAs 存在量不多,而且長度不一的緣故。長度較短的5S rRNA 及tRNA 等則在膠體下方也以特定色帶呈現。

 
    儀器用具:65℃恒溫水槽;微量離心機;Mupid II 迷你電泳槽及鑄膠器;UV transilluminator;防護面罩;拍立得相機;抽氣櫥
 
 
    藥品試劑:
    自菌體抽取的RNA (I-1, I-2, U-1, and U-2) 與胞外轉錄反應所制備的正意股及反意股RNA (#1, #2, #3, and #4)。
    5×formaldehyde gel running buffer (0.1 M MOPS, pH 7.0; 40 mM sodium acetate; 5 mM EDTA)
    Formaldehyde gel loading buffer (0.25% bromophenol blue; 0.25% xylene cyanol;50% glycerol; 1 mM EDTA)
    Ethidium bromide (1 μg/μL in dH2O/DEPC)
    dH2O/DEPC
 
    方法步驟:
    ◆ 注意:
    a. 下列實驗主要參照Sambrook and Russell (2001) 的方法。
    b. 進行下列實驗時請務必戴手套。
    c. 甲醛與formamide 都放在抽氣櫥內。
    準備一片1.2%甲醛洋菜膠體:
    1) 秤取0.48 g agarose置100 mL血清瓶,加入25 mL dH2O/DEPC。
    2) 以微波爐加熱溶解的后,微微晃動血清瓶使混合均勻,再移至60℃恒溫水槽靜置5 min。
    3) 將裝著agarose 溶液的血清瓶移至抽氣櫥,加入8 mL 的5× formaldehyde gel running buffer 及7.2 mL 的甲醛,輕輕搖晃血清瓶以便混合均勻。
??  膠體總體積為40 mL,為了避免agarose 溶液因溫度快速下降,很快便凝固,應力求動作迅速,但應避免劇烈搖晃,以免弄出一大堆氣泡,影響膠體凝結。
    4) 盡速于抽氣櫥內把混合液倒入膠體鑄模,并插入樣本梳 (teeth comb)。膠體凝固至少需時30 min。
    電泳:
    1) 要進行電泳時,把已凝固的洋菜膠體放進電泳槽,并加入適量1×formadehyde gel running buffer。
    2) 以50 V 定電壓預跑5 min。
    3) 依序注入上列8 個RNA 樣本,以50 V 定電壓進行電泳,待追蹤染劑移動至膠體三分的二處時,關閉電源,將膠體移至UV transilluminator box,觀察RNA 色帶的存在情形,并拍照存證。
??  注意:這一片膠體往下將用來進行北方轉印實驗,請小心處置!
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